报价前确认批次文件范围 · 仅供研究使用
  • 规格确认
  • 按需提供批次文件
  • 商务支持 · 西安
  • 确认目的地供应资格
西安诺和达生物科技有限公司

询价清单

发送询价前,请核对产品数量。

查看完整询价清单继续浏览产品此清单仅用于询价,不是结算页面,也不会收取费用。
申请企业账户

研究与见解

LC–MS 之前的肽清理:更干净并不总是意味着更高的回收率

作者:NHD 技术团队已发表
多肽样品净化流程的概念示意图
多肽样品净化流程的概念示意图;非实验数据。

表面活性剂和聚合物可能会干扰 LC–MS 分析,因此通常需要对样品进行净化。然而,净化步骤也可能造成肽损失或改变仍可检测的序列。正确的问题不仅仅是污染物是否被去除,而是所选择的方法是否保留了 实际样品起始量和污染物负荷.

一项低起始量研究显示出明显的边界

2023 年的一项研究将磁珠辅助的单管固相增强肽制备法 (SP2) 与用于去除十二烷基硫酸钠 (SDS) 的乙酸乙酯萃取法进行了比较,并评估了 SP2 去除聚乙二醇 (PEG) 的效果。模型样品是 Arabidopsis thaliana )胰蛋白酶酶解物,而不是纯化的合成肽批次。研究人员检查了 10 ng、250 ng 和 10 µg 的肽起始量,并定义了 SDS 或 PEG 污染水平。 [1,摘要和结果]

在 10 ng 肽起始量时,与研究对照相比,使用 0.1% 安全数据表 丢失了 3.5% ,并将平均总肽强度降低了 2.4%。在与 1% 安全数据表, 它输了 73.6% ,并将平均总强度降低了 44.7%. 这些是 识别和 MS 强度指标,而不是称重所得的质量回收率。他们揭示了这种低输入基质、仪器和污染物组合的方法边界。 [1,§2.5,图10和表S2]

10 ng 拟南芥 肽酶解物 已识别肽的变化与对照 平均总 MS 强度变化
0.1% SDS 污染 −3.5% −2.4%
1% SDS 污染 −73.6% −44.7%

同一篇论文报告说,对于 250 ng 输入 ,用 5% SDS 和 1% PEG, SP2 丢失 2.9% 已识别的肽 ,而总强度与对照相比增加了 7.6% 。这与 10 ng 条件下的显著损失并不矛盾:起始量和污染物条件不同。强度的增加可以反映干扰的减少,并且不能被解读为净化后更多的肽质量。 [1,§2.4]

净化方法适用性确认方案

使用实际的肽量、基质和预期的污染物范围。在仪器兼容性允许的情况下比较免净化对照,并在工作流程中的指定点包含已知的肽混合物或同位素标准品。跟踪至少三个结果:残留污染物/干扰、已识别的肽数量以及目标肽的定量响应。检查保留时间和疏水性模式,因为稳定的总肽计数可能隐藏优先损失。记录标准品是在清理之前还是之后添加的;只有净化前加入的内标才能反映该步骤的损失。

如果某种方法在微克输入方面看起来非常出色,请在纳克级别重复,然后再将其用于稀缺样品。净化方法可能适合广泛的发现工作,但不适合回收率较差的目标肽。 LC-MS 肽鉴定指南 有助于确认哪些峰是真正的目标; 质量文件中心 解释了为什么方法结果没有建立特定批次的放行声明。

一项独立的 SDS 辅助蛋白质组学研究使用十二烷基硫酸钾沉淀,然后进行 C18 SPE,并报告在其测试条件下 约 80% 的肽回收率 用于 20 µg 标准肽 。该研究的方法、起始量和终点指标,均不同于上述 10 ng SP2 鉴定数量。它为方法设计提供了一个比较依据,而不是汇总回收率或沉淀在低输入条件下优越的证据。 [2,图1B]

净化方法通过/不通过记录

列出预期的输入量和污染物浓度、必须保持可检测的肽类别、内标添加点、残留污染物测定以及每个关键目标的预先声明的允许损失。比较清理后的这些结果:目标肽回收率、序列覆盖/识别计数、峰形和基质抑制。一种方法仅在其规定的目的和范围内通过;如果所需目标消失,“干净的色谱图”是不够的。

证据边界

这是 植物酶解物的方法学证据。它不验证所有肽化学、临床基质、研究材料批次或仪器的 SDS/PEG 净化。这些数字应该促使根据本地实际起始量和污染物浓度开展实验,而不是普遍接受的阈值。

原始资料与主张溯源

  1. Benchmarking of Two Peptide Clean-Up Protocols: SP2 and Ethyl Acetate Extraction for Sodium Dodecyl Sulfate or Polyethylene Glycol Removal from Plant Samples before LC-MS/MS. International Journal of Molecular Sciences. 2023. DOI 10.3390/ijms242417347、PMID 38139176。 地点: 摘要(研究矩阵、输入、总体比较);结果§2.4(250 ng合并污染和2.9%/7.6%); §2.5,图10和表S2(10 ng,0.1%与1%SDS和3.5%/73.6%识别损失,2.4%/44.7%强度损失)。已检查主要全文 XML。
  2. A Simple Sodium Dodecyl Sulfate-assisted Sample Preparation Method for LC-MS-based Proteomics Applications. Analytical Chemistry. 2012. DOI 10.1021/ac203394r、PMID 22339560。 地点: 图 1B 和相邻结果文本(KDS 沉淀和 20 µg 标准肽的 C18 SPE 后的回收率约为 80%)。独立初级实验;不同的端点和与文献[1]不同的起始量。
来源及编辑方法

AI辅助撰写的初稿;独立的《食品法典》来源、图片及七种语言的审阅;未声明经过人工专业审阅

下面的参考文献中列出了 2 链接记录。 阅读社论和 AI 援助政策.

如何解读这篇文章

本文汇总了第三方记录,并不对任何目录批次的身份、质量、安全性或有效性作出任何认定。.

研究用途边界: 本网站讨论的目录材料仅供实验室研究、开发和制造使用,不适用于人类或兽医用途。此内容不是医疗建议,也不提供给药说明。

主要记录和权威来源

  1. Benchmarking of Two Peptide Clean-Up Protocols: SP2 and Ethyl Acetate Extraction for Sodium Dodecyl Sulfate or Polyethylene Glycol Removal from Plant Samples before LC-MS/MS来源 1. 摘要(研究矩阵、输入参数、总体比较);结果 §2.4(250 ng 混合污染物和 2.9%/7.6%); §2.5、图10和表S2(10 ng,0.1%与1% SDS,以及3.5%/73.6%的鉴定损失,2.4%/44.7%在
  2. A Simple Sodium Dodecyl Sulfate-assisted Sample Preparation Method for LC-MS-based Proteomics Applications来源 2. 图 1B 及相邻的“结果”部分文本(对 20 µg 标准肽进行 KDS 沉淀和 C18 SPE 处理后,回收率约为 80%)。独立的主要实验;与 [1] 中的终点和输入不同。.

编辑来源检查: Codex 人工智能辅助编辑审稿 · 2026-09-23T19:26:53+08:00